His标签蛋白纯化介质(IDA系列)
包括以下产品:
HP-IDA / HP-IDA-120 / CP-IDA / GP-IDA
1、产品简介
His标签融合蛋白纯化通常采用固定化金属离子亲和层析(IMAC)纯化的方法,主要利用介质配基首先螯合的金属离子,再吸附表面带组氨酸标签的蛋白。由于重组蛋白分子上的His标签可与螯合的金属离子(如 Ni2+、Co2+、Cu2+等)发生亲和吸附,通过调节溶液中洗脱剂浓度,实现重装蛋白的吸附与解吸附,从而达到分离纯化蛋白的目的。博进生物的His标签蛋白纯化介质IDA系列专为His标签融合蛋白的纯化而设计,以具有刚性结构的聚丙烯酸酯微球作为基质,采用亚氨基二乙酸(IDA)为金属螯合配基,标准备货螯合Ni2+(常称为镍介质)适用于His标签蛋白的快速高效提取,且具有较大通量的特点,可快速从细胞破碎液/培养液中捕获His标签融合蛋白,尤其适用于粘稠料液。
请注意,选择该产品时切勿在缓冲液中添加巯基乙醇或二硫苏糖醇等还原剂,将导致金属离子脱落(如需要添加还原剂组分,建议选择博进生物的NTA产品)。
2、产品特性
参数 |
HP-IDA |
HP-IDA-120 |
CP-IDA |
GP-IDA |
平均粒径 |
70±20μm |
110±25 μm |
70±20 μm |
70±20 μm |
孔径 |
30nm |
30nm |
100nm |
500nm |
基质 |
聚丙烯酸酯微球 |
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配基 |
IDA |
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动态载量 |
≥30mg His-Pro/ml wet resin gel |
≥10 mg His-Pro/ml wet resin gel |
≥15 mg His-Pro/ml wet resin gel |
≥10 mg His-Pro/ml wet resin gel |
最大耐压 |
1 MPa |
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pH稳定性 |
3~13(长时间);2~14(短时间) |
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保存 |
2~30 ℃(20%乙醇) |
3、使用方法
His标签蛋白纯化-IDA介质系列层析操作通常包括平衡、上样、淋洗、洗脱、再生等步骤。
具体的操作方法如下:
3.1平衡:
用5~10CV的平衡缓冲液平衡层析柱,至流出液电导和pH不变(与平衡液一致)。实际操作中,一般选用中性/弱碱性(pH 7~8)的高盐(0.15~1.0 M NaCl或其它中性盐)缓冲液。其中常用磷酸盐缓冲体系,如20 mM PB+0.5 M NaCl, pH 7.4。对于结合力较强的带组氨酸标记的蛋白质,平衡缓冲液中可加入低浓度(20~40 mM)的咪唑。
3.2上样:
样品缓冲液应尽可能与平衡液一致。固体样品可用平衡液溶解配制;低浓度样品溶液可用平衡液透析;高浓度样品溶液可用平衡液稀释。为了避免堵塞层析柱,样品应经离心或微滤处理。进料量根据介质的载量和料液中目标蛋白的含量计算。为了减少杂蛋白在层析柱上的吸附,可在确保目标蛋白吸附的情况下适当增加样品缓冲液中的咪唑。对于包涵体蛋白,相应地可在平衡、上样和洗脱的缓冲液中加入8M 尿素或6M 盐酸胍。
3.3淋洗:
上样结束后继续用平衡缓冲液淋洗,直至紫外下降至基线。
3.4洗脱:
洗脱一般有两种方式,一是采用竞争试剂,如咪唑(0~0.5M)、组氨酸(0~0.05M)、氯化铵(0~2M)等将蛋白质从柱子上置换下来;二是减小pH值,洗脱目标蛋白,大多数蛋白质在pH 4~6的范围内可被洗下来。用竞争试剂咪唑或减小pH值的方法洗脱蛋白质,金属离子仍结合在柱子上;若用竞争试剂组氨酸或氯化铵洗脱蛋白质,会将金属离子和蛋白质的复合物一起洗下来。
洗脱缓冲液中必须加入0.15~1.0 M NaCl以消除离子交换作用。梯度洗脱最好在起始平衡液的恒定pH下进行,可采用线性梯度或阶越式梯度洗脱。
3.5再生:
介质使用多次后(具体与发酵液样品及杂质特性等有关),或者螯合其它金属离子前,需要进行再生处理。
脱Ni:用5倍体积的EDTA溶液(0.2M EDTA+0.5M NaCl, pH 7.0)以低流速(建议正常上样流速的1/2)清洗介质,然后用5倍体积的0.5M NaCl清洗以去除残留的EDTA。
清洗:可用2~3倍体积以上的2M NaCl清洗,除去以离子键结合的蛋白,再用3倍体积以上的纯水冲洗。
可用5倍体积的0.5-1M NaOH(或2M NaCl溶液)清洗介质,除去色素或者其他强吸附蛋白,然后用0.2M PBS缓冲液平衡冲洗5-10倍体积(有条件的情况下可通过pH检测溶液pH值变化,pH洗至缓冲液的pH值即可)。
可用5~10倍体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗(20 min 以上),并用3~10倍体积的纯水冲洗。请注意,异丙醇不易清洗干净,建议加大冲洗体积。
此外,也可用2倍体积含去污剂的碱性或酸性溶液清洗。如用0.1~0.5%的非离子去污剂+0.1M乙酸冲洗1~2h,并用5~10倍体积的70%乙醇冲洗去除去污剂,然后用3~10倍体积的纯水冲洗。
挂Ni:采用3-5倍体积的0.1M NiSO4溶液与介质混合搅拌4h,然后过滤。(亦可柱上操作,用3-5倍柱体积的0.1M NiSO4溶液低流速上柱,为确保挂Ni充分,可采用NiSO4溶液循环的方式上柱三次)。
平衡:用3倍体积的去离子水清洗介质,再用5-10倍体积含0.25M咪唑+0.5M NaCl溶液冲洗,去除残留的Ni2+,最后用5倍体积去离子水清洗介质即可。
3.6保存:
采用2-5倍体积的20%乙醇清洗介质,结束后储存于2-30℃环境中。
3.7其它注意事项:
在使用和保存柱子的时候,要避免柱子流干或密封不严,防止气泡进入。
4.4、订购信息
产品名称 |
货号 |
规格 |
产品名称 |
货号 |
规格 |
His标签蛋白纯化介质 (HP-IDA)
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BG11-1110-02 |
50mL |
His标签蛋白纯化介质 (CP-IDA)
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BG11-2110-02 |
50mL |
BG11-1110-04 |
500mL |
BG11-2110-04 |
500mL |
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BG11-1110-05 |
1L |
BG11-2110-05 |
1L |
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BG11-1110-07 |
10L |
BG11-2110-07 |
10L |
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BG11-1110-08 |
20L |
BG11-2110-08 |
20L |
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His标签蛋白纯化介质 (HP-IDA-120)
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BG11-1310-02 |
50mL |
His标签蛋白纯化介质 (GP-IDA)
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BG11-3110-02 |
50mL |
BG11-1310-04 |
500mL |
BG11-3110-04 |
500mL |
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BG11-1310-05 |
1L |
BG11-3110-05 |
1L |
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BG11-1310-07 |
10L |
BG11-3110-07 |
10L |
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BG11-1310-08 |
20L |
BG11-3110-08 |
20L |