CPQ-60强阴离子交换柱

CPQ-60强阴离子交换介质产品说明书

1.产品简介

离子交换层析是生物大分子分离纯化最常用的方法。博进生物开发的CPQ-60强阴离子交换介质以具有刚性结构的聚甲基丙烯酸酯微球作为基质，采用特有的表面修饰技术大幅提高聚合物基质的亲水性，具有高分辨率、低非特异性吸附以及优良的生物相容性等优点。设计孔径广泛适用于除多肽、病毒外，大部分抗体和重组蛋白的纯化。

2.产品特性

3. 应用

CPQ强阴离子交换介质广泛用于抗体、重组蛋白、酶、多糖、核酸、质粒、病毒等的分离纯化。层析操作通常包括平衡、上样、淋洗、洗脱、再生等步骤。具体的操作方法如下：

平衡：用5~10CV的平衡缓冲液（Buffer A，如20 mM PB，pH7.0，具体的缓冲体系应根据目标蛋白的稳定性和等电点进行筛选和优化）平衡层析柱，至流出液电导和pH不变（与平衡液一致）。

上样：样品缓冲液应尽可能与平衡液一致。固体样品可用平衡液溶解配制；低浓度样品溶液可用平衡液透析或添加相应量的盐；高浓度样品溶液可用平衡液稀释。为了避免堵塞层析柱，样品应经离心或微滤（0.45μm）处理。上样量根据介质的载量和料液中目标蛋白的含量计算。

淋洗：继续用平衡缓冲液淋洗至基线。

洗脱：用洗脱缓冲液（20 mM PB+1M NaCl，pH7.0，也可采用pH梯度洗脱）洗脱（可采用线性梯度洗脱或阶越梯度洗脱），收集流出液。

再生：每次层析之后可用1-2M NaCl清洗层析柱，除去强结合的蛋白。

原位清洗：介质使用5~10次（具体次数与原料的种类和来源及实验要求有关）后，需要对介质进行在位清洗：

（1）对于通过离子键强结合的蛋白，可用2M NaCl清洗10-15min；

（2）对沉淀蛋白、疏水性结合的蛋白、脂蛋白，可用1M NaOH冲洗3~4CV；

（3）对强疏水性结合的蛋白、脂蛋白和脂类物质，可用70%乙醇或30%异丙醇冲洗3~4CV（使用高浓度的有机溶剂时，为了避免产生气泡，应采用逐步增加有机溶剂浓度的方法）。

保存：4-30^oC下20%乙醇中保存；层析柱中的介质可用20%的乙醇冲洗后保存于4-30^oC。

其他注意事项：在使用和保存柱子的时候，要避免柱子流干或密封不严，防止气泡进入。